MabSelect 系列 Protein A 亲和树脂单克隆抗体捕获纯化工艺优化研究
摘要
针对治疗性单克隆抗体下游纯化捕获环节存在载量低、填料循环寿命短、宿主杂质去除效果差等问题,以 Cytiva MabSelect 全系列 Protein A 树脂为研究对象,系统对比 MabSelect、MabSelect SuRe、MabSelect SuRe LX、MabSelect PrismA 四种介质的基质结构、动态结合载量、耐碱清洗能力与杂质清除性能。以 CHO 细胞表达 IgG1 型单抗发酵上清为原料,构建平衡 - 多级洗涤 - 酸性洗脱 - 酸洗剥离 - 在位清洗(CIP)标准化层析工艺,通过单因素试验优化上样 pH、洗脱 pH、洗涤盐浓度、CIP 碱浓度等关键工艺参数。结果显示:MabSelect PrismA 综合性能,6 min 停留时间下动态载量可达 80 mg IgG/mL 树脂,最高耐受 1.0 mol/L NaOH 在位清洗,稳定循环 200 次以上;优化后的两级梯度洗涤体系可去除 93% 以上宿主蛋白(HCP),单抗总回收率≥90%,洗脱单体纯度>95%,宿主 DNA 残留<10 pg/mg,Protein A 配基泄漏<5 ng/mg 抗体。该套工艺适配实验室小试、中试放大与商业化生产线,可用于完整 IgG、Fc 融合蛋白、双特异性抗体纯化,为抗体药物下游捕获平台工艺开发提供标准化技术方案。
0 引言
单克隆抗体药物是肿瘤、自身免疫性疾病临床治疗的核心生物制剂,完整下游纯化流程分为亲和捕获、精细层析纯化、制剂缓冲液置换三大单元,其中 Protein A 亲和层析承担绝大部分宿主杂质去除工作,是决定产品纯度、生产成本的关键步骤。传统天然 Protein A 琼脂糖基质机械强度弱、耐碱性差、配基易水解脱落,动态载量偏低,仅能短期循环使用,难以适配高滴度补料发酵液大规模连续生产。
Cytiva 开发的 MabSelect 系列重组 Protein A 树脂采用无动物源稳定配基与高交联刚性琼脂糖骨架,形成四代梯度产品矩阵,分别适配基础科研、临床前中试、商业化大规模生产等不同应用场景。现有研究多针对单一型号树脂开展工艺摸索,缺少全系列树脂横向性能对比,同时缺少统一、可线性放大的标准化缓冲体系与分级 CIP 清洗方案。
本文系统表征 MabSelect 系列树脂理化与层析性能,建立通用缓冲液体系,系统优化关键工艺参数,评估填料循环稳定性与杂质去除能力,形成一套合规、低成本、可直接放大的单抗捕获工艺,为创新抗体药物下游工艺开发与申报提供完整数据支撑。
1 材料与仪器
1.1 实验材料
层析介质:MabSelect、MabSelect SuRe、MabSelect SuRe LX、MabSelect PrismA(Cytiva 原装 50% 乙醇保护浆液);HiTrap 5 mL 预装柱、Tricorn 5/50 层析柱。
样品:CHO 细胞补料发酵上清,人源 IgG1 单抗,滴度 2.8 g/L,0.22 μm 水系滤膜过滤后备用。
试剂:磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、醋酸钠、Tris、NaCl、冰醋酸、CHAPS(色谱纯);HCP ELISA 检测试剂盒、宿主 DNA 荧光定量试剂盒、CE-SDS 毛细管电泳试剂、蛋白定量试剂盒。
耗材:0.22 μm 滤器、50 mL 无金属离心管、NanoTemper 检测毛细管。
1.2 仪器设备
ÄKTA avant 25 全自动蛋白纯化系统;NanoDrop 紫外分光光度计;高速冷冻离心机;pH 计、电导率仪;毛细管电泳仪;荧光定量 PCR 仪;动态光散射粒度仪。
2 实验方法
2.1 树脂基础性能表征
1)动态结合载量测定:各型号树脂装填 1 mL Tricorn 层析柱,平衡缓冲液充分平衡,设置 2.4 min、4 min、6 min 三组停留时间上样发酵上清,实时监测 UV280 吸收曲线,以 10% 抗体穿透点计算 QB10 动态载量。
2)耐碱循环稳定性测试:每次层析结束后采用不同浓度 NaOH 反向冲洗柱床 10 min,连续循环 150 次,每 30 次取样测定动态载量、Protein A 配基泄漏量,评价填料性能衰减程度。
3)配基泄漏检测:收集全部洗脱组分,双抗夹心 ELISA 法定量游离 Protein A 含量。
2.2 标准化层析缓冲液配方
1)平衡缓冲液:20 mM NaPi,150 mM NaCl,pH 7.4;
2)高盐洗涤缓冲液:20 mM NaPi,500 mM NaCl,pH 7.0;
3)弱酸预洗缓冲液:50 mM 醋酸钠,pH 6.0;
4)洗脱缓冲液:50 mM 醋酸钠,pH 3.5;
5)中和缓冲液:1 mol/L Tris-HCl pH 8.0(洗脱收集管预先添加,体积占洗脱液 5%);
6)酸洗剥离液:100 mM 醋酸,pH 2.9;
7)分级 CIP 再生液:0.1 mol/L、0.5 mol/L、1.0 mol/L NaOH;
8)填料保存液:20% 乙醇 - PBS 无菌溶液。
2.3 标准层析操作流程
柱床体积 1 mL,流速 180 cm/h,停留时间 6 min;上样量控制为树脂动态载量 75%;完整流程:3 倍柱体积(CV)平衡→上样→5 CV 高盐洗涤→1 CV 弱酸预洗→3 CV 酸性洗脱→2 CV 酸洗剥离→3 CV CIP 碱液循环清洗→纯水中和→平衡保存。
2.4 单因素工艺优化试验
以单抗回收率、HCP 残留、抗体单体纯度为评价指标,分别考察上样 pH(6.8、7.2、7.4、7.8)、洗脱 pH(3.2、3.5、3.8、4.2)、洗涤 NaCl 浓度(150、300、500、800 mM)、CIP 碱浓度对纯化效果的影响。
2.5 产品质量检测方法
抗体浓度采用 UV280 定量,消光系数 E1%=13.7;HCP 采用 ELISA 试剂盒定量;宿主 DNA 采用 qPCR 检测;抗体纯度、单体比例采用 CE-SDS 分析;蛋白聚集采用动态光散射与 nanoDSF 联合检测;Protein A 泄漏采用 ELISA 定量。
3 结果与分析
3.1 MabSelect 系列树脂基础性能对比
四种树脂均采用高交联球形琼脂糖基质,配基为环氧偶联重组 Protein A,仅孔径、配基修饰、耐碱改造存在差异,关键性能见表 1。
表 1 MabSelect 系列树脂核心层析性能
| 树脂型号 | 平均粒径 /μm | 6 min 停留 QB10 载量 /(mg・mL⁻¹) | 最高耐受 NaOH 浓度 | 推荐循环次数 | 适用场景 |
|---|
| MabSelect | 90 | 45~50 | 0.1 mol/L | 50~80 | 实验室小试、工艺初筛 |
| MabSelect SuRe | 85 | 50~60 | 0.5 mol/L | 100~150 | 临床前中试、常规发酵液 |
| MabSelect SuRe LX | 85 | 65~72 | 0.5 mol/L | 120~160 | 高滴度补料发酵、批量制备 |
| MabSelect PrismA | 60 | 80 | 1.0 mol/L | 180~220 | 商业化连续生产线 |
停留时间显著影响动态载量:停留时间缩短至 2.4 min 时,PrismA 载量仍可达 65 mg/mL,适配快速连续层析;初代 MabSelect 载量下降超 30%,不适合高速生产。耐碱循环结果表明,PrismA 经 1.0 mol/L NaOH 连续 150 次循环后,动态载量仅下降 6.2%,配基泄漏<5 ng/mg 抗体;初代 MabSelect 仅耐受 0.1 mol/L NaOH,同等循环下载量衰减 25% 以上,配基泄漏量提升 10 倍。
3.2 上样 pH 对抗体结合效率的影响
上样 pH 7.2~7.4 区间 IgG 与 Protein A 疏水、氢键结合作用强,抗体穿透量低,回收率稳定在 90% 以上;pH 低于 7.0 时分子间作用力减弱,抗体穿透流失,回收率下降 6%~10%;pH 高于 7.8 体系静电排斥增强,非特异性吸附杂蛋白增多,HCP 残留显著上升。确定优上样 pH 为 7.4。
3.3 多级洗涤体系除杂效果
仅使用 PBS 单一洗涤时,洗脱产物 HCP 残留>1200 ng/mg;增加 500 mM NaCl 高盐洗涤后,疏水性宿主蛋白大量去除,HCP 降至 320 ng/mg;叠加 pH 6.0 弱酸预洗,解离弱结合杂蛋白与核酸杂质,HCP 降至 85 ng/mg,杂质去除率达 93% 以上,多级洗涤仅造成 1.2% 抗体回收率损失,除杂优势显著。
3.4 洗脱 pH 对抗体回收率与聚集的影响
洗脱 pH 3.2 条件下抗体解离,回收率 92.5%,但长期酸性环境引发抗体不可逆聚集,单体比例仅 86.3%;pH 3.8 洗脱聚集程度大幅降低,单体纯度 96.8%,但洗脱不全,回收率降至 83.7%;综合平衡回收率与产品质量,优洗脱 pH 为 3.5,洗脱液收集后立即用 Tris 中和至中性,可稳定维持单体纯度 95% 以上。
3.5 CIP 在位清洗工艺优化
初代 MabSelect 仅允许 0.1 mol/L NaOH 单次接触≤5 min,长期强碱清洗会造成配基水解脱落;SuRe、SuRe LX 系列可稳定使用 0.5 mol/L NaOH 清洗 10 min / 循环;PrismA 适配 1.0 mol/L NaOH 深度清洗,可有效去除脂质、蛋白沉积,同时实现病毒灭活。针对高脂质、高 HCP 发酵样品,采用 100 mM 硫代甘油预处理后再碱洗,填料使用寿命可提升 30%。
3.6 不同类型抗体适配验证
完整人源 IgG1/IgG2/IgG4 均可在全系列树脂上高效捕获,采用 PrismA 纯化回收率稳定 90%~93%;双特异性抗体优先选用 SuRe LX 与 PrismA,可通过梯度 pH 洗脱去除单臂副产物;Fab、VHH 等无 Fc 段抗体需搭配 MabSelect VH3 树脂配套纯化。
3.7 整体纯化工艺综合指标
采用 MabSelect PrismA 与优化后标准化工艺处理 CHO 发酵上清,整体纯化指标:单抗总回收率 90.8%,洗脱单体纯度 95.6%,HCP 残留 82 ng/mg,宿主 DNA<10 pg/mg,Protein A 配基泄漏 3.2 ng/mg,纯化产物各项指标满足离子交换、疏水层析精细纯化进料标准。
4 讨论
4.1 树脂选型策略
实验室小规模工艺筛选、低滴度样品纯化选用 MabSelect,采购成本低,满足基础研发需求;临床前中试、常规滴度发酵液优先 MabSelect SuRe,平衡载量与耐碱性能,循环寿命适中;高滴度补料发酵、大批量样品制备选用 MabSelect SuRe LX,加长间隔臂大幅提升动态载量,降低填料使用体积;商业化连续生产线、高杂质难纯化样品选择 MabSelect PrismA,超高载量搭配 1.0 mol/L NaOH 深度清洗,大幅降低填料更换成本与综合生产成本。
4.2 关键工艺控制要点
发酵上清必须经 0.22 μm 过滤,细胞碎片、脂质颗粒会堵塞树脂孔道,造成载量性下降;高脂质发酵液可添加 0.05% CHAPS 预处理去除脂类杂质,不干扰 IgG 与 Protein A 结合;高速连续生产选用 PrismA 可将停留时间缩短至 2.4~4 min,高聚集、高粘度抗体延长停留时间至 6 min,保证抗体分子充分扩散至树脂孔道;低 pH 洗脱液必须即时中和,避免抗体长时间酸性暴露引发聚集、电荷异质性升高;全套缓冲液与树脂配套 Cytiva 法规支持文件(RSF),碱洗 CIP 步骤同步实现病毒灭活,满足国内外新药申报合规要求。
4.3 与传统 Protein A 填料对比优势
MabSelect 系列刚性交联琼脂糖可耐受 300 cm/h 高流速,柱压低、无压缩,同等柱体积处理量为传统树脂 3~4 倍;SuRe 与 PrismA 耐碱改造配基,循环次数提升 2~4 倍,显著降低填料更换成本;配基单点稳定偶联,游离 Protein A 渗漏量降低 90%,减少下游去除配基的额外工序;整套缓冲体系通用,工艺可线性放大,从 1 mL 实验室小试柱直接放大至千升级工业层析柱,无明显工艺偏移。
5 结论
本文系统完成 MabSelect 四代 Protein A 亲和树脂性能表征,建立一套标准化、可线性放大、合规的单抗捕获层析工艺,优化平衡、多级洗涤、酸性洗脱、分级 CIP 全套缓冲与操作参数。MabSelect PrismA 综合性能优,6 min 停留动态载量 80 mg IgG/mL,耐受 1.0 mol/L NaOH 在位清洗,稳定循环 200 次以上;两级梯度洗涤体系高效去除宿主蛋白、DNA、脂质杂质,单抗回收率≥90%,单体纯度>95%。该工艺适配完整 IgG、Fc 融合蛋白、双特异性抗体等各类治疗性抗体,覆盖实验室研发、中试放大、商业化连续生产全场景,为生物制药下游捕获平台工艺开发提供标准化技术参考,可直接用于工艺申报、放大生产与质量控制体系搭建。